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8.5 : Fruits - Biologie


Anatomie des ovaires

Figure (PageIndex{1}) : Coupe transversale de Lilium ovaire, montrant A=gamétophyte femelle, B=Ovule, C=Locule, D=Placenta, E=Dissépiment. L'étiquette en rouge ajoutée à la contribution originale de File:Lilium ovary L.jpg fournie par Jon Houseman et Matthew Ford. JonRichfield, CC BY-SA 4.0, via Wikimedia Commons.

Figure (PageIndex{2}) : Un Lilium ovaire au cours du deuxième stade de l'embryon à quatre nucléées. A-Micropyle, B-Tégument, Cellules C-Antipodales, Cellules D-Synergides. Échelle = 0,1 mm. Jon Houseman, CC BY-SA 4.0, via Wikimedia Commons.

Figure (PageIndex{3}): A Lilium ovaire au stade huit nucléés. A-Cellules synergides, B-Vacuole, C-Micropyle, noyau D-Polaire, E-Cellule antipodale, F-tégument. Échelle = 0,1 mm. Jon Houseman, CC BY-SA 4.0, via Wikimedia Commons.

Passer de la fleur au fruit

Figure (PageIndex{4}) : ces deux images montrent des grappes de fleurs de poirier du même arbre. Le cluster de gauche est à un stade de développement plus précoce. La corolle est toujours attachée et les étamines rayonnent vers l'extérieur pour disperser le pollen. Dans l'image de droite, la corolle est tombée et les anthères se sont ratatinées. Le calice est toujours visible et, juste en dessous, l'ovaire semi-inférieur et l'hypanthium commencent à gonfler. Finalement, ceux-ci gonfleront à plusieurs fois leur taille actuelle et formeront les fruits que nous connaissons sous le nom de poires. Photos par Maria Morrow, CC-BY 4.0.

Figure (PageIndex{5}): Salal (Gaulthérie Shallon) est un arbuste de la même famille que les bleuets et les madrones. Chaque pendentif, corolle en forme d'urne tombera, laissant le calice derrière. L'ovaire inférieur se développera en une baie. Sur cette image, des fleurs plus jeunes sont produites sur le côté gauche à la fin de l'inflorescence, tandis que les fleurs plus âgées se transforment en fruits sur le côté droit. Photo de Maria Morrow, CC-BY 4.0.

Anatomie des fruits

Figure (PageIndex{6}): A Zea mays noyau. Ce fruit est un caryopse, le tégument est soudé au péricarpe. Les étiquettes sont les suivantes : A=Péricarpe, B=Aleurone, C=Tip cap, D=Endosperm, E=Coleorhiza, F=Radicle, G=Hypocotyle, H=Plumule, I=Scutellum, J=Coleoptile. Échelle = 1,4 mm. Jon Houseman, CC BY-SA 4.0, via Wikimedia Commons.

Figure (PageIndex{7}) : Un schéma d'une drupe. Le péricarpe d'un fruit peut être complètement fusionné (comme dans la figure (PageIndex{7})) ou séparé en couches distinctes : l'endocarpe (le plus à l'intérieur), le mésocarpe (au milieu) et l'exocarpe (le plus à l'extérieur). Une drupe est un type de fruit avec un endocarpe pierreux renfermant une seule graine, un mésocarpe charnu et un fin exocarpe. Image de LadyofHats, domaine public, via Wikimedia Commons.

Quelques types de fruits courants

Akène

Figure (PageIndex{8}) : Ces deux images montrent les fruits produits à partir de l'inflorescence capitulaire d'un pissenlit. A gauche, ils sont difficiles à distinguer, formant une sphère autour du réceptacle. A droite, certains fruits ont été emportés par le vent, rendant les autres plus faciles à voir. Chaque fleur a produit un akène à la base (à partir d'un ovaire infère). Seul le calice reste, des autres verticilles floraux, et s'est formé en une structure en forme de parapluie pour la dispersion par le vent. Photos par Maria Morrow, CC-BY 4.0.

Baies

Figure (PageIndex{9}) : une tomate est une baie. Le péricarpe a des couches distinctes, mais toutes sont charnues. L'exocarpe forme une fine peau autour d'un mésocarpe charnu. Il y a beaucoup de graines. Les étiquettes sont les suivantes : A=Calice, B=Pédoncule, C=Exocarpe, D=Mésocarpe, E=Endocarpe, F=Funiculus, G=Graine, H=Placenta, I=Locule. Image des tomates de © 2005 Utilisateur : FoeNyx, CC BY-SA, via Wikimedia Commons avec des étiquettes ajoutées par Maria Morrow.

Figure (PageIndex{10}): Un hesperidium (agrumes) est une baie modifiée. L'endocarpe forme la peau autour des segments, contenant des graines et des trichomes remplis de jus. L'exocarpe forme une croûte huileuse. A=Moelle, B=Graine, C=Locule, D=Trihomes remplis de jus, E=Endocarpe, F=Mesocarpe, G=Exocarpe. Image de la tranche d'orange de Paolo Neo, domaine public, via Wikimedia Commons avec des étiquettes ajoutées par Maria Morrow.

Figure (PageIndex{11}): Un pepo est une autre baie modifiée. L'exocarpe forme une croûte (un peu) dure (A). Le mésocarpe (B) est encore charnu. Il contient de nombreuses graines (C). Image de l'utilisateur : Tomia, CC BY-SA, via Wikimedia Commons avec des étiquettes ajoutées par Maria Morrow.

Fruits accessoires

Figure (PageIndex{12}): Un pépin est un fruit accessoire fabriqué à partir d'un hypanthium charnu. Le noyau papyracé est le péricarpe, qui contient les graines. Eric Guinther, CC BY-SA, via Wikimedia Commons.

Figure (PageIndex{13}) : Les fraises sont des fruits accessoires formés à partir d'un réceptacle renflé. Le réceptacle rougit et gonfle, repoussant les fruits en développement vers l'extérieur. Les fruits sont des akènes qui ressemblent à des graines, collés à l'extérieur du réceptacle. Le calice de la fleur est la partie verte et feuillue. Si vous regardez attentivement, vous pouvez voir les styles attachés aux akènes. Auteur de la photo de fraise complète inconnu, sous licence Creative Commons Attribution-Share Alike 3.0 Unported. Photo de fraise en tranches de Paolo Neo, domaine public, via Wikimedia Commons.

Attributions

Contenu de Maria Morrow, CC-BY 4.0


Institut indien de recherche végétale (IIVR)

Dans cet article, nous discuterons de: - 1. Introduction à IIVR 2. Mandat de IIVR 3. Variétés de légumes.

Introduction à l'IIVR :

La recherche maraîchère en Inde a été stimulée par la création du projet de recherche coordonnée de toute l'Inde (AICRP) sur les cultures maraîchères en 1971 à l'Institut indien de recherche agricole (IARI), à New Delhi. Le statut de l'AICRP sur les légumes a été élevé au niveau de Direction du projet de recherche sur les légumes (PDVR) en 1986 avec son siège à l'IARI, New Delhi.

En 1992, le siège a été déplacé de New Delhi à Varanasi et le PDVR a été élevé au niveau d'institut national sous l'ICAR en 1999 et a été nommé Institut indien de recherche sur les légumes (IIVR). Les programmes de recherche de l'IIVR sont largement organisés en 3 divisions principales, à savoir l'amélioration des cultures, la gestion de la recherche naturelle et la protection des cultures.

L'IIVR dispose de laboratoires bien équipés sur la gestion des RPG, la sélection végétale, la génétique et la cytogénétique, la sélection moléculaire, la transgénique, la culture tissulaire, la technologie des semences, l'agronomie, la science du sol, la physiologie et la biochimie des cultures, la technologie post-récolte, les statistiques, l'économie et la vulgarisation, les ravageurs intégrés et la gestion des maladies, l'analyse des résidus et le contrôle biologique.

Une banque de gènes est également disponible pour le stockage à moyen terme de semences de matériel génétique. IIVR possède une ferme de recherche bien développée de 150 acres et plusieurs serres, poly-maisons et filets. L'institut a une position financière solide comme en témoigne l'allocation budgétaire suivante au cours du plan quinquennal X.

L'Institut indien de recherche sur les légumes est situé sous la grande périphérie de la ville sainte de Varanasi à 82,52°E de longitude et 25,10°N de latitude. Il est situé à environ 20 km du cœur de la ville vers le sud-ouest sur Varanasi – Adalpura Road.

La zone reçoit une pluviométrie moyenne de 1000 mm qui est répartie sur une période de plus de 100 jours avec une période de pointe entre juillet et août. Des averses éparses se produisent pendant les mois d'hiver. En général, la température varie de 5°C à 42°C. Le mois le plus froid est janvier tandis que la température maximale est observée en mai et juin.

Mandat de l'IIVR:

1. Entreprendre des recherches innovantes, fondamentales, stratégiques, anticipatives et appliquées pour développer des technologies visant à améliorer la productivité des cultures maraîchères, leur qualité nutritive et la gestion post-récolte.

2. Offrir un leadership scientifique dans la recherche coordonnée en réseau pour résoudre les problèmes de production spécifiques à l'emplacement et pour surveiller la production de semences de sélectionneur de variétés et de lignées parentales publiées/notifiées.

3. Agir en tant que dépôt national d'informations scientifiques relatives aux cultures maraîchères et en tant que centre de formation pour le perfectionnement de la main-d'œuvre scientifique travaillant sur les cultures maraîchères.

4. Développer des variétés/hybrides à haut rendement, de bonne qualité, résistants aux maladies et aux insectes nuisibles de cultures maraîchères sélectionnées.

5. Développer des technologies avancées de production et de protection pour les variétés/hybrides de légumes sélectionnés.

6. Entreprendre la collecte, la maintenance et la documentation de matériel génétique dans les cultures maraîchères.

Variétés potagères développées à l'IIVR:

Des efforts ont été faits pour développer des variétés/hybrides à haut rendement avec des fruits de meilleure qualité, une résistance aux stress biotiques et abiotiques. L'institut a développé 42 variétés/hybrides, qui comprennent 5 de tomate, 4 de brinjal 10 de gombo, 6 de pois, 4 de niébé, 2 chacun de courge bouteille, piment, radis et courge cendrée, 1 chacun de chou-fleur, melon musqué , citrouille, courge amère et haricot vert.

La brève description de ces produits est la suivante :

Tomate:

DVRT-1 (Kashi Amrit):

Variété déterminée issue du croisement interspécifique L. esculentum (cv.Sel.7) x L. hirsutum f. glabratum (selon B6013′) par rétrocroisement pédigrée, fruits ronds, jolis rouges et charnus avec un poids moyen de 108 g, adapté à la culture pendant la période infestée par ToLCV, rendement moyen 620 q/ha.

H-86 (Kashi Vishesh):

Résistant au ToLCV, développé en utilisant L.hirsutum f.glabratum B�′ x Sel 7 comme parent donneur suivant la méthode de sélection par backcross, plantes déterminées, vert foncé, fruits rouges, sphériques, taille moyenne à grande, poids moyen des fruits 80 g , première récolte à 70-75 jours après repiquage rendement 400-450 q/ha.

Kashi Hemant (IIVR Sel-1):

Développé par sélection généalogique à partir d'un croisement Sel-18x Flora Dade, plantes déterminées, fruits attrayants rouges et ronds, 80 g, rendement 400-420 q/ha.

Kashi Sharad (IIVR Sel-2):

Développé par sélection généalogique à partir d'un croisement MTH-6x Kalyani Eunish, plantes indéterminées feuilles larges, fruits attrayants rouges, légèrement ovales, fermes, péricarpe épais durée de conservation plus longue, poids des fruits 90 à 95 g, rendement 400-500 q/ha.

Kashi Anupam (DVRT-2):

Développé par hybridation entre L. esculentum cv.’Sel-7′ et L.hirsutum f. glabratum ‘B6013’, après sélection par rétrocroisement, plantes déterminées, fruits gros, poisson plat rond, indenté à l'extrémité de la fleur du fruit, rouge attrayant avec 5-6 loges maturité moyenne, 75-80 jours après repiquage, rendement 500-600 q/ha.

Brinjal:

Kashi Taru (IVBL-9):

Plantes hautes et dressées, (120-130 cm) avec des feuilles et une tige vert foncé, première floraison 45-50 jours après repiquage, fruits longs, violets (longueur 31 cm et diamètre 5 cm) cueillette à 75-80 jours après repiquage, moyenne rendement 700-750 q/ha.

Kashi Prakash (IVBR-1):

Plantes semi-dressées, tiges et feuilles vertes, fruits attrayants avec des taches vert clair, calice épineux, poids moyen 190 g, cueillette à 80-82 jours après repiquage, rendement moyen 650-700 q/ha. Hybrides

Kashi Sandesh (VRBHR-1):

Hybride au port semi-dressé (hauteur 71,0 cm) avec tige verte et feuilles vert violacé, les fleurs apparaissent à 45 jours après repiquage, fruits violets, de taille moyenne, de forme ronde, longueur du fruit 12,4 cm, diamètre 10,2 cm et poids 225 g , cueillette à 76 jours après repiquage, rendement moyen 780 q/ha.

Plante semi-dressée, hauteur 90-100 cm, avec tige et feuilles vert clair pour la première floraison à 35-40 jours après repiquage, fruits violet clair, texture longue et douce, longueur moyenne 13 cm et diamètre 3 cm, première cueillette à 65-70 jours après repiquage, rendement moyen 800 q/ha.

Chili:

Kashi Anmol (KA-2):

Issu de deux cycles de sélection récurrente simple d'une introduction sri lankaise, plantes déterminées, naines (60-70 cm) avec pigmentation nodale sur tige, fruits pendants attrayants verts, première cueillette à 55 jours après repiquage, rendement moyen 200 q/ha, modérément résistant à l'anthracnose, au dépérissement et à la tache Cerscopora dans les conditions de terrain.

Hybride:

Kashi Surkh (CCH-2):

Hybride F1 d'un croisement entre la lignée CMS (CCA 4261) et Pusa Jwala, plantes semi-déterminées (1-1,2 m), pigmentation dressée et nodale sur tige, fruits vert clair, droits, longueur 11-12 cm, convient au vert ainsi que récolte de fruits rouges mûrs, première récolte après 55 jours de repiquage, rendement en fruits verts 240 q/ha, rendement en fruits rouges environ 140 q/ha, tolérant aux tripes, aux acariens et aux virus.

Haricot français:

Kashi Param (IVFB-1):

Développé par sélection en lignée pure, plantes déterminées (70 cm de long) et feuilles vert foncé, gousse charnue, longueur 14,7 cm, ronde, vert foncé, rendement en gousse 120-140 q/ha.

Niébé :

Kashi Shyamal (IVRCP-1):

Plantes naines et buissonnantes, hauteur 70-75 cm, branches 3-4 par plante, floraison précoce (40 jours après semis), première récolte 48 jours après semis, 35-40 gousses par plante, rendement en gousses 70-80 q/ha, tolérant au virus de la mosaïque dorée.

Kashi Gauri (VRCP-2):

Variété de type buisson, naine, photo-insensible et précoce adaptée au semis au printemps, en été et en saison des pluies, floraison en 35-38 jours et gousses prêtes à être récoltées en 45-48 jours après semis, gousses de 25-30 cm de long, légères vert, doux, charnu et exempt de couche de parchemin, résistant au virus de la mosaïque dorée, Psedocercospora cruenta et rendement moyen en gousse verte 100-120 q/ha

Kashi Unnati (VRCP-3):

Un type photo-insensible, nain et buissonnant (40-45 cm de hauteur), variété précoce adaptée au semis en printemps-été et saisons des pluies, floraison en 30-35 jours et gousses prêtes à récolter en 40-45 jours, 40-45 gousses par plante avec une longueur moyenne des gousses de 30-35 cm, le rendement moyen des gousses d'environ 125-150 q/ha, résistant au virus de la mosaïque dorée et aux maladies à Pseudocercospora cruenta.

Kashi Kanchan (VRCP-4):

Type buisson et nain (50-60 cm de hauteur), variété photo-insensible et précoce adaptée au semis au printemps été et saisons pluvieuses, fleurs en 40-45 jours, cabosses prêtes à récolter en 50-55 jours, 40-45 cabosses par plante, gousses vert foncé, tendres, charnues avec moins de fibres et exemptes de couche de parchemin, résistantes au virus de la mosaïque dorée et à Pseudocercospora cruenta, 150-200 q/ha gousses vertes.

Gombo:

Kashi Mohini (VRO-3):

Plantes hautes (110-140 cm), fleurs au 4ème-5ème nœud pendant l'été et 5ème-7ème nœud pendant la saison des pluies après 39-41 jours de semis, fruits à cinq arêtes, gousses de 11,3 – 12,6 cm de long au stade commercialisable , adapté à la culture d'été et de saison des pluies, rendement 130-150 q/ha. résistant à YVMV dans des conditions de terrain.

Kashi Mangali (VRO-4):

Développé par sélection de lignées pures, plantes hautes, hauteur 120-125 cm, fleurs au 4ème au 5ème nœud après 40-42 jours après semis, fruits à cinq arêtes, vert clair, rendement 130-150 q/ha, résistant à YVMV dans des conditions de terrain .

Kashi Vibhuti (VRO-5):

Variété à port nain, hauteur de la plante 60-70 cm pendant la saison des pluies et 45-50 cm pendant la saison estivale, porte 2-3 branches avec une longueur inter-nodale courte, la floraison commence sur le 4ème au 5ème nœud après 38-40 jours après semis, la plante porte 18-22 fruits de 8-10 cm de long au stade commercialisable, rendement 170-180 q/ha, résistant à YVMV.

Kashi Pragati (VRO-6):

Plantes hautes (130-175 cm) avec 1-2 branches efficaces, la première fleur apparaît après 36-38 jours après le semis sur le 4ème nœud pendant la saison des pluies et le 3ème nœud pendant la saison estivale, fruits de 8-10 cm de longueur au stade commercialisable, 23 -25 cabosses plantent et donnent 180-190 q/ha en saison pluvieuse et 130-140 q/ha en été, résistant à YVMV.

Kashi Satdhari (IIVR-10):

Hauteur de la plante 130-150 cm avec 2-3 branches effectives, floraison à 42 jours après semis au 3ème au 4ème nœud, 18-25 fruits/plante avec sept crêtes, longueur des fruits 13-15 cm au stade commercialisable, rendement 110-140 q /ha, résistant à YVMV dans les conditions de terrain.

Kashi Lila (IIVR-11):

Plante de hauteur moyenne (110-130 cm), floraison 30-34 jours après le semis, convient à la culture pendant les saisons pluvieuses et estivales en tant que récolte précoce en raison de la tolérance aux basses températures, les fruits ont cinq crêtes, vertes et longues de 13-15 cm, résistantes à YVMV, rendement 150-170 q/ha.

Hybrides :

Shitla Uphar (DVR-1):

Plantes de taille moyenne, (110-130 cm), floraison à 38-40 jours après semis au 4ème-5ème nœud, fruits verts, 11-13 cm de long aux stades commercialisables, rendement 150-170 q/ha, résistant à la mosaïque des nervures jaunes virus.

Shitla Jyoti (DVR-2):

Plantes de taille moyenne (110-150 cm), floraison 30-40 jours après semis au 4ème-5ème nœud, fruit vert, 12-14 cm de long au stade commercialisable, rendement 180-200 q/ha, résistant à YVMV.

Kashi Bhairav ​​(DVR-3):

Plantes de taille moyenne avec 2-3 branches, fruits vert foncé, 10-12 cm de long au stade commercialisable, rendement 200-220 q/ha, résistant à YVMV dans les conditions de terrain.

Kashi Mahima (DVR-4):

Plantes hautes, hauteur 130-170 cm, floraison à 36-40 jours après semis au 4ème-5ème nœud, fruits verts, 12-14 cm de long au stade commercialisable, rendement 200-220 q/ha, résistance au champ contre YVMV.

Pois:

Kashi Nandini (VRP-5):

Variété à maturation précoce développée par sélection généalogique à partir du croisement P 1542 x VT-2-1, hauteur de la plante 47-51 cm, les fleurs apparaissent à 32 jours après le semis, 7-8 gousses par plante, gousses 8-9 cm de long, attrayant , bien rempli de 8-9 graines, décorticage 47-48%, rendement 110-120 q/ha, tolérant à la mineuse des feuilles.

Kashi Udai (VRP-6):

Variété à maturation précoce développée par sélection généalogique à partir du croisement Arkel x FC-1, hauteur de la plante 58-62 cm, 50% des plantes portent des fleurs 35-37 jours après le semis, les plantes ont un feuillage vert foncé et des entre-nœuds courts avec 8-10 gousses par plante, gousses attrayantes, 9-10 cm de long, remplies de 8-9 graines audacieuses, pourcentage de décorticage 48, rendement 100-110 q/ha.

Kashi Shakti (VRP-7):

Variété à maturité moyenne développée par sélection généalogique du croisement Hara Bona x NDVP-8, hauteur de la plante 90-98 cm, fleurs à 54-56 jours après le semis, les plantes ont un feuillage vert foncé avec 11-12 gousses par plante, gousses 10,0- 10,5 cm de long, attrayant rempli de 7-8 graines audacieuses, pourcentage de décorticage 48-49, rendement 140-160 q/ha.

Kashi Mukti (VRP-22):

Variété à maturation précoce résistante à l'oïdium développée par sélection généalogique à partir du croisement No.7 x PM-5, hauteur de la plante 50-53 cm, fleurs à 35-36 jours après le semis, gousses de 8,5-9 cm de long, avec 8-9 graines à texture douce et audacieuse, pourcentage de décorticage 48-49, rendement 110-120 q/ Ha.

Kashi Kanak (VRP-2):

Variété précoce développée par sélection, hauteur de la plante 50-55 cm, feuillage vert foncé, gousse droite, vert clair, longueur 7-8 cm remplie de graines audacieuses, première cueillette 55-58 jours après le semis, rendement en gousse verte 60- 80 q/ha.

Kashi Arati (VRP-3):

Variété de mi-saison, floraison 45-50 jours après semis, gousses vertes, grain gras, rendement moyen 80-120 q/ha. Un radis

Kashi Sweta (IIVR-1):

Développé par sélection de radis cv. Chetki, adapté à une récolte précoce, racines comestibles 30-35 jours après le semis, racines 25-30 cm de long, 3,3-4,0 cm de diamètre, droites, effilées avec bout pointu, rendement 450-470 q/ha.

Kashi Hans (IIVR-2):

Développé par sélection, adapté à la plantation de septembre à février, récolte après 40-45 jours de semis, peut rester au champ jusqu'à 10-15 jours après maturité comestible, modérément résistant à la brûlure alternarienne, feuilles douces et lisses comme les épinards, racines droites , effilée, longueur 30-35 cm, diamètre 3,5-4,2 cm, rendement 430-450 q/ha.

Courge cendrée :

Kashi Dhawal (IVAG 502):

Issu d'une collection locale, vigne longueur 7,5-8 m, fruits oblongs, chair blanche, épaisseur 8,5-8,7 cm, disposition des graines linéaire, poids moyen 11-12 kg, durée de culture 120 jours, rendement 550-600 q/ha.

Issu d'une collection locale, longueur de vigne 7,5-8 m, fruits ronds avec un poids moyen de 10-12 kg, chair du fruit blanche avec 7 cm d'épaisseur, disposition des graines linéaire, durée de culture 110-120 jours, rendement 55-60 t/ha .

Chou-fleur:

Maturité précoce, peut tolérer de fortes précipitations pendant sa croissance végétative, caillé type semi-dôme, blanc compact, texture fine, poids 300-450 g, rendement 300-350 q/ha.

Citrouille:

Issu du croisement entre NDPK-24 x PKM par sélection généalogique, vignes courtes, feuilles vert foncé avec des taches blanches, fruits verts, sphériques 2,5-3,0 kg au stade vert, rendement de 300-350 q/ha en 65 jours de durée de culture .

Cantaloup:

Vigne moyenne, feuilles peu lobées, couleur vert foncé, fruits ronds, avec des sutures vertes ouvertes et proéminentes, poids 650-725 g, nature semi-glissante, croûte fine, lisse, jaune pâle à maturité, chair orange saumon (couleur mangue), épaisse , très juteux, TSS 13-14% et graines peu emballées dans la cavité de la graine, meilleure durée de vie après récolte avec une bonne transportabilité, tolérante au mildiou et au mildiou, maturité moyenne, rendement 200-270 q/ha.

Gourde:

Hybride à long fruit avec vigne verte et croissance vigoureuse, fruit droit, vert clair, longueur 30-32 cm, poids moyen 780-850 g, rendement 500-550 q/ha, adapté à la culture en saison des pluies et en été.

Variété précoce issue du croisement IC-92465 x DVBG-151, fruits vert clair, longueur 30 cm, diamètre 7 cm, poids des fruits 800-900 g et rendement 480-550 q/ha, tolérante à l'anthracnose et adaptée aux culture de la saison estivale.

Courge amère:

Cette variété est issue du croisement IC-85650B x ​​IC-44435A, ayant des fruits vert foncé et longs, des épines douces, une longueur de 16-18 cm, un poids de fruit de 90-110 g et un rendement de 220-220 q/ha.


8.5 : Fruits - Biologie

Horticulteur

Faire de la nourriture, des médicaments et du plaisir à partir des plantes.

Les mots latins hortus (plante de jardin) et culture (culture) forment ensemble l'horticulture, classiquement définie comme la culture de plantes de jardin. Mais aujourd'hui, l'horticulture est plus que la culture de plantes de jardin. Les horticulteurs travaillent dans la production végétale la propagation des plantes l'amélioration des plantes le génie génétique la physiologie des plantes la biochimie des plantes la conception, l'installation, la construction, l'entretien et le stockage, la transformation et le transit (de fruits, de baies, de noix, de légumes, de fleurs, d'arbres, d'arbustes et de gazon) . Ils améliorent le rendement, la qualité, la valeur nutritionnelle et la résistance aux insectes, aux maladies et aux stress environnementaux des cultures. Ils rendent les plantes plus adaptables à différents climats et sols et mieux adaptées aux utilisations ou aux processus alimentaires. Et ils cultivent et améliorent les plantes utilisées pour les médicaments ou les épices.

Les horticulteurs peuvent travailler dans l'industrie, le gouvernement ou les établissements d'enseignement. Il peut s'agir d'ingénieurs en systèmes de culture, de chefs d'entreprise de commerce de gros ou de détail, de spécialistes des plantes dans l'industrie de l'aménagement paysager, de propagateurs et de spécialistes de la culture tissulaire (fruits, légumes, plantes ornementales et gazon), d'inspecteurs de cultures, de conseillers en production végétale, de spécialistes de la vulgarisation, d'obtenteurs, de chercheurs scientifiques et éducateurs. Vous trouverez des horticulteurs dans des bureaux, des laboratoires, des serres et dans des domaines de production ou de recherche.

Au collège, suivez des cours de biologie, de chimie, de mathématiques, de génétique, de physiologie, de statistiques, d'informatique, d'aménagement paysager et de construction et de communication pour compléter les cours de phytologie et d'horticulture. Les cours de phytologie et d'horticulture comprennent les matières végétales, la propagation des plantes, la culture tissulaire, la production végétale, la manipulation après récolte, la sélection végétale, la nutrition des cultures, l'entomologie, la pathologie végétale, l'économie et les affaires. Pour de nombreuses carrières, vous devez avoir une maîtrise ou un doctorat.

Au lycée, suivez des cours de base en rhétorique et communication orale, mathématiques, chimie, biologie et informatique.

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La deuxième page du téléchargement comprend la description de la carrière ci-dessus.

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Premier contact:
Hannah Dankbar
Responsable du programme de vulgarisation alimentaire locale
ANR/CRD
Extension coopérative de la Caroline du Nord
Université d'État de Caroline du Nord
[email protected]

L'objectif de l'Extension Local Food Program est de faciliter la production, la commercialisation et la consommation d'aliments cultivés, pêchés et élevés en Caroline du Nord.

North Carolina Cooperative Extension et de nombreuses organisations et parties prenantes travaillent avec nos communautés sur le développement et l'expansion des systèmes alimentaires locaux à travers l'État. Ce site Web sur les aliments locaux a été développé par North Carolina Cooperative Extension pour fournir des ressources sur les systèmes alimentaires locaux et des informations en temps opportun à tous les résidents et entreprises de l'État. L'objectif du site Web est de fournir des informations et des liens vers des ressources de Cooperative Extension ainsi que d'autres organisations NC et partenaires de l'État travaillant sur la programmation alimentaire locale. Il s'agit d'un site dynamique qui est destiné à inclure de nouvelles ressources au fur et à mesure qu'elles sont développées au fil du temps.


Utilisations rituelles

Figure 8.8.5 Le cactus peyotl contient une drogue hallucinogène qui est encore utilisée par certains Amérindiens pour des rituels religieux.

Certaines drogues psychoactives, en particulier les hallucinogènes, sont utilisées à des fins rituelles depuis la préhistoire. Par exemple, les Amérindiens ont utilisé le cactus peyotl contenant de la mescaline (illustré à la figure 8.8.5) pour des cérémonies religieuses depuis aussi longtemps que 5 700 ans. Dans l'Europe préhistorique, le champignon Amanite muscaria, qui contient une drogue hallucinogène appelée muscimol, a été utilisé à des fins similaires. Diverses autres drogues psychoactives – dont le jimsonweed, les champignons à psilocybine et le cannabis – sont également utilisées depuis des millénaires, par divers peuples, à des fins rituelles.

L'usage récréatif de drogues psychoactives a généralement pour but d'altérer la conscience et de créer un sentiment d'euphorie communément appelé « high ». Certaines des drogues les plus couramment utilisées à des fins récréatives sont le cannabis, l'éthanol (alcool), les opioïdes et les stimulants (comme la nicotine). Les hallucinogènes sont également utilisés à des fins récréatives, principalement pour les altérations qu'ils provoquent dans la pensée et la perception.

Certains chercheurs ont suggéré que l'envie de modifier son état de conscience est une pulsion humaine universelle, similaire à l'envie de satisfaire la soif, la faim ou le désir sexuel. Ils pensent que cet instinct est même présent chez les enfants, qui peuvent atteindre un état altéré par des mouvements répétitifs, tels que tourner ou se balancer. Certains animaux non humains manifestent également une volonté d'expérimenter des états altérés. Ils peuvent consommer des baies ou des fruits fermentés et s'enivrer. La façon dont les chats réagissent à l'herbe à chat (voir Figure 8.8.6) est un autre exemple.

Figure 8.8.6 Ce chat profite d'une plante d'herbe à chat et apprécie apparemment ses effets psychoactifs.

Addiction, dépendance et réadaptation

Les substances psychoactives entraînent souvent des changements subjectifs que l'utilisateur peut trouver agréables (euphorie) ou avantageux (augmentation de la vigilance). Ces changements sont gratifiants et renforcent positivement, ils ont donc un potentiel d'abus, de dépendance et de dépendance. Dépendance fait référence à l'usage compulsif d'une drogue, malgré les conséquences négatives qu'un tel usage peut entraîner. L'utilisation prolongée d'une drogue provoquant une dépendance peut entraîner une dépendance à la drogue. Dépendance peut être physique et/ou psychologique. Elle survient lorsque l'arrêt de la consommation de drogue provoque des symptômes de sevrage. La dépendance physique produit des symptômes physiques de sevrage, qui peuvent inclure des tremblements, des douleurs, des convulsions ou de l'insomnie. La dépendance psychologique produit des symptômes de sevrage psychologique, tels que l'anxiété, la dépression, la paranoïa ou les hallucinations.

La réadaptation pour toxicomanie et toxicomanie implique généralement une psychothérapie, qui peut inclure à la fois une thérapie individuelle et une thérapie de groupe. Des organisations telles que les Alcooliques anonymes (AA) et les Narcotiques anonymes (NA) peuvent également être utiles aux personnes qui tentent de se remettre d'une dépendance. Ces groupes se décrivent eux-mêmes comme des bourses d'entraide internationales et leur objectif principal est d'aider les toxicomanes à atteindre et à maintenir la sobriété. Dans certains cas, la réadaptation est facilitée par l'utilisation temporaire de substances psychoactives qui réduisent les fringales et les symptômes de sevrage sans créer eux-mêmes une dépendance. La drogue méthadone, par exemple, est couramment utilisée pour traiter la dépendance à l'héroïne.


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Etudes génétiques chez la mouche des fruits

La disponibilité de plusieurs outils génétiques a fait de la drosophile un système modèle idéal pour déchiffrer la fonction des gènes et les voies moléculaires. Quelques exemples de ces outils sont : la génération facile, par le biais de croisements génétiques et de sélection de descendants, de stocks génétiques stables, les criblages génétiques puissants avec mutagenèse ou insertion de transposone pour la perturbation des gènes, l'utilisation de la transformation génétique, la disponibilité d'outils permettant la génération de gènes conditionnels. (système GAL4/UAS), l'utilisation de l'ARNi pour le knock-down conditionnel et la technologie plus récente d'édition du génome CRISPR/Cas9 [1].

La drosophile a un petit génome de 180Mb avec environ 13600 gènes. Le génome complet a été séquencé [2]. Une image globale de l'expression des gènes, de la régulation de la chromatine, de la réplication de l'ADN, de l'épissage (environ la moitié des gènes de la drosophile sont régulés par l'épissage alternatif), à travers les différentes étapes du développement, a contribué à la compréhension de la régulation du développement de la drosophile [3].

Le génome de D. melanogaster est distribué en seulement 4 chromosomes (3 autosomes et une paire de chromosomes sexuels). L'une des paires d'autosomes, connue sous le nom de chromosome du point, est significativement plus petite que les autres [4]. L'étude des chromosomes sexuels chez la drosophile a contribué à la compréhension de la détermination du sexe et de la compensation posologique. Chez les mouches, la dose de chromosomes X dans le complément chromosomique est responsable de la détermination des mâles, et non la présence du chromosome Y comme cela se produit chez l'homme. La détection du double chromosome X chez la drosophile se fait au niveau cellulaire et déclenche une cascade transcriptionnelle conduisant à la détermination du sexe [5].


Projet d'investigation en biologie classe 12 | PDF

Nous savons que trouver un projet d'investigation en biologie est la partie la plus difficile d'un projet d'expo-sciences pour la classe 12, et parfois il suffit d'un peu d'aide pour se concentrer sur les types de sujets qui vous intéresseraient. Pour vous aider à trouver une idée de projet de recherche en biologie qui vous intéresse, vous pouvez sélectionner l'une des catégories ci-dessous sous la rubrique EXPÉRIENCES, vous trouverez des dizaines d'expériences intéressantes.

Les sciences au lycée couvrent une variété de sujets en biologie comme la microbiologie, la zoologie, la botanique, les idées de projets de biotechnologie, l'écologie, la météorologie, etc. Par conséquent, rien n'est interdit lorsqu'il s'agit de choisir un sujet de projet de biologie pour la classe 12 ! Ces idées conviendraient à la plupart des programmes d'études secondaires. Lors de l'examen de la liste, n'oubliez pas que vous pouvez rendre l'une de ces idées plus complexe en modifiant les variables et en comparant les résultats.

Vous pouvez être guidé par votre professeur pour votre choix de sujet. Plus le projet est original ou nouveau, mieux ce sera. Mais il doit être réaliste en termes de temps disponible et à un niveau atteint en biologie du secondaire supérieur. Vous devez passer en revue la littérature disponible pour savoir quel type de travail a été fait. Cela vous aidera à rejeter certaines des alternatives et éventuellement à en modifier d'autres. Il peut aussi être la source de nouvelles idées. En réalisant ces projets d'enquête, vous acquerrez une expérience de la recherche en plus d'offrir la possibilité d'acquérir des compétences telles que la photographie, l'électronique, etc.

Il n'est pas rare que des élèves trouvent des sujets appropriés pour des projets de recherche. L'éventail des options est large, car il existe autant de domaines scientifiques que de domaines de recherche différents. Parmi les sujets suivants, l'étudiant pourra choisir quelque chose pour lui-même :


Effet de la concentration de sucre sur le transfert des molécules d'eau à travers une membrane semi-perméable

Effet de la température sur la concentration en vitamine C chez Solanum lycopersicum
Comment la modification de la température affecte-t-elle la concentration de vitamine C dans Solanum lycopersicum telle que mesurée par une solution avec du 2,6-dichlorophénol indophénol ?
Informations d'arrière-plan
La vitamine C fait référence à l'acide ascorbique et à ses sels. C'est un nutriment essentiel pour l'homme car il n'est pas synthétisé par l'organisme. La vitamine C agit comme cofacteur dans de nombreuses réactions enzymatiques, dont la plus notable est la synthèse de collagène. Par conséquent, le manque de vitamine C conduit à la maladie appelée scorbut.
La vitamine C est présente dans les plantes (comme les fraises, les oranges et les tomates) et dans la plupart des viandes animales (en particulier le foie). Cependant, la teneur en vitamine C de ces aliments est proportionnelle au temps et à la température auxquels ils sont conservés ou cuits. Ceci parce que l'oxydation se produit : 2 acide ascorbique + O2 2 déhydroascorbate + 2 H2O
La vitesse de cette réaction augmente avec la température. Elle est également augmentée car les fruits tels que les tomates contiennent une enzyme appelée L-ascorbate oxydase qui catalyse la réaction chimique précédente.
Nature du titrage utilisé : 2,6-Dichlorophénol L'indophénol est un colorant bleu redox. Lorsqu'il est réduit par l'acide ascorbique, il devient incolore :
DCPIP (bleu) + acide ascorbique→ DCPIPH2 (incolore) + acide déhydroascorbique
Cette réaction se produit dans un rapport 1:1, c'est-à-dire que 1 molécule de DCPIP réagit avec 1 molécule d'acide ascorbique.
Teneur en vitamine C dans les tomates : selon l'USDA, les tomates contiennent 13,7 mg de vitamine C pour 100 grammes.
Hypothèse
Je m'attends à ce que le volume de solution de tomate nécessaire pour titrer le DCPIP augmente avec la température. En effet, je prédis que l'oxydation de la vitamine C augmentera avec la température et que la teneur en vitamine C de la tomate sera donc inversement proportionnelle à la température. Je m'attends à ce que la vitamine C diminue assez constamment avec la température car la dénaturation de la L-ascorbate oxydase sera compensée par la forte augmentation de l'activité cinétique des particules.
Variables
Variable indépendante:
Température à laquelle l'échantillon de jus de tomate a été chauffé : 20 °C, 40 °C, 60 °C, 80 °C, 100 °C.
Ces températures ont été obtenues en chauffant tous les échantillons de jus de tomate dans un bain-marie et en les retirant lorsqu'ils atteignaient la température souhaitée.
Variable dépendante:
Volume de solution de tomate nécessaire pour neutraliser 0,5 cm3 de 2,6-Dichlorophénol Indophénol (DCPIP). Le DCPIP devient incolore lorsqu'il est réduit. Ainsi, lorsque toutes les molécules de DCPIP sont réduites par l'acide ascorbique, il y a un changement de couleur visible. A partir de ces données, j'ai ensuite calculé la quantité de Vitamine C (g) dans 100 cm3 de la solution.
Variables de contrôle Effet s'il n'est pas contrôlé Comment il a été contrôlé
Type de tomate L'utilisation de différents cultivars de tomates ou de tomates à différentes maturités modifierait la quantité de vitamine C dans la solution de tomate. Cela poserait un problème en la comparant aux valeurs de la littérature. J'ai utilisé des tomates connectées à la même vigne, en m'assurant que les tomates provenaient de la même plante et du même cultivar. Ils étaient tous rouges et mûrs.
Conditions dans lesquelles les tomates ont été stockées après l'achat. La conservation des tomates au soleil et à la chaleur diminue leur teneur en vitamine C. Si les tomates étaient stockées à des températures supérieures à 20 °C, cela rendrait également le premier ensemble de résultats dénué de sens car les tomates avaient déjà été chauffées au-dessus de cette température. J'ai acheté ces tomates sur un marché en plein air. Comme c'était l'hiver, la température était bien inférieure à 20 °C. Ensuite, ils ont été conservés dans un réfrigérateur.
Cependant, je ne sais pas si ces tomates ont été conservées à des températures plus élevées avant l'achat.
Turbidité du jus de tomate Une plus grande turbidité rendrait la détermination du point final dans le titrage plus difficile. La solution devait être homogène pour que tous les essais aient la même quantité de vitamine C. J'ai écrasé les tomates en purée et j'ai ajouté de l'eau pour la diluer. Ensuite, j'ai filtré le jus pour éliminer les matières solides. J'ai fait toute la solution à la fois pour que toutes les solutions utilisées aient le même niveau de turbidité. La solution était rouge/orange, le point final a donc été décidé non pas lorsque la solution était incolore mais lorsqu'elle était de la couleur rouge/orange d'origine.
Intensité lumineuse dans la pièce Le point final a été déterminé en utilisant ma vue, qui est subjective à l'intensité lumineuse. Une intensité lumineuse plus faible ferait apparaître la solution plus sombre, donc je titrerais plus de solution de tomate. J'ai fait le titrage dans la même pièce le même jour et à égale distance de la fenêtre.
Température à laquelle le titrage a eu lieu Les températures modifient l'énergie cinétique des particules, provoquant la réaction entre le DCPIP et l'acide ascorbique à des vitesses différentes. Par conséquent, le titre changerait. Le jus de tomate chauffé a été laissé refroidir à 20 °C. La température a été mesurée à l'aide d'une sonde de température ± 0,1°C.
Temps pendant lequel la solution de tomate a été chauffée La durée du chauffage affecte l'oxydation globale. Des périodes de temps plus longues provoquent de plus grandes quantités d'oxydation, diminuant la teneur en acide ascorbique.

Des tubes d'ébullition ont été chauffés ensemble dans le même bain d'eau de sorte qu'une chaleur égale soit appliquée. Les solutions ont ensuite été retirées lorsqu'elles ont atteint la température requise en veillant à ce que chaque échantillon consécutif soit chauffé pendant la même durée que l'échantillon précédent plus le temps nécessaire pour que la température suivante soit atteinte. Bien que je n'aie pas chauffé toutes les solutions en même temps, c'était le plus haut niveau de contrôle qui aurait pu être fait à l'aide d'un appareil de laboratoire. Une fois chauffées, elles ont été placées dans un bécher d'eau à 14 °C ± 0,1 °C pour refroidir rapidement.
Volume de solution de DCPIP à 1 % dans le tube à essai Un plus grand volume de DCPIP nécessiterait le titrage de plus grandes quantités de jus de tomate pour que la neutralisation se produise. J'ai fixé ce volume à 0,5 cm3 pour tous les essais.
Concentration de DCPIP et de solution de tomate L'utilisation de concentrations différentes à chaque essai modifierait la quantité de volume nécessaire pour atteindre le point final de titrage. La concentration de DCPIP a été maintenue à 1% et la solution de tomate a été réalisée en utilisant 750 g de tomate et 250 cm3 d'eau.
Variables de contrôle Effet s'il n'est pas contrôlé Comment il a été contrôlé
Vitesse à laquelle le jus de tomate a été ajouté avec la burette La réaction d'oxydoréduction nécessite du temps. Une plus grande vitesse d'addition réduirait le temps alloué pour que la réaction se produise. En conséquence, plus de jus de tomate serait ajouté. J'ai fixé le taux à un flux constant de gouttes. J'ai utilisé la même burette et j'ai marqué le degré d'ouverture sur la burette pour qu'il reste constant.
Quantité de mélange pendant le titrage Le mélange pendant le titrage augmente l'énergie cinétique des particules, augmente la vitesse de réaction et diminue le volume de solution de tomate nécessaire. Aucune agitation ne produirait des résultats précis car les réactifs n'entreraient pas en contact aussi facilement qu'ils s'appuieraient sur la diffusion. J'ai mélangé la solution du tube à essai en utilisant un mouvement régulier de ma main tout au long des essais pour tous les essais. Je me rends compte que c'est inexact. Cependant, je n'avais pas accès à un agitateur magnétique.
Appareil
Pipette en verre de 2 cm3 ±0,006 cm3
Burette 50 cm3 ±0,05 cm3
Bécher de 1000 cm3
5 tubes bouillants
Éprouvette graduée 50 cm3 ± 1 cm3
Papier filtre
Sonde thermomètre enregistreur de données ±0.1°C
Balance numérique ± 0,01 g
Matériaux
Comment cela a été fait Incertitude
Solution de DCPIP à 1% (2,6-Dichlorophénol Indophénol) Elle a été produite par un technicien Inconnu car elle a été produite par un technicien
Solution de tomate à 75 % Réduisez les tomates fraîches en purée.
Mesurer 750,00 g de purée de tomates à l'aide de la balance numérique.
Mesurer 250 g d'eau à l'aide de la balance numérique
Solution filtrante avec papier filtre Incertitude de la balance numérique ±0,01 g
Incertitude de la purée de tomate : ±0,01 g
Incertitude de l'eau : ±0,01 g
Incertitude globale de la solution Tomate :
(±0,02g)/(1000g)=±0,002 %
Méthode
Chauffage des solutions de tomates
La chambre de contrôle est à 20 °C ±0,1 °C avec sonde thermomètre.
Transférer 50 cm3 de solution de tomate à l'aide d'une éprouvette graduée de 50 cm3 dans cinq tubes bouillants.
Mettez l'un des tubes d'ébullition de côté.
Mélanger 300 cm3 d'eau et 50 g de sel (NaCl) dans un bécher de 500 cm3
Placer 4 tubes bouillants dans un bécher et chauffer avec un bec Bunsen.
Placer un thermomètre dans chaque tube d'ébullition.
Retirez les premiers tubes d'ébullition lorsque le thermomètre indique 40°C ±1°C. Placer ensuite le tube d'ébullition dans le bain d'eau froide jusqu'à ce que le thermomètre indique 20 °C ± 1 °C.
Répétez l'étape 7 lorsque les tubes d'ébullition atteignent respectivement 60°C, 80°C et 100°C.
Titrage:
La chambre de contrôle est à 20 °C ±1°C avec thermomètre.
Transférer 0,5 cm3 de DCPIP à l'aide d'une pipette en verre de 2 cm3 dans un tube à essai.
Décanter 50 cm3 de la solution de tomate chauffée à 20 °C dans la burette.
Titrer le DCPIP dans le tube à essai à l'aide d'une burette ± 0,1 cm3 jusqu'à ce que le DCPIP perde sa couleur bleu foncé et devienne rouge/orange comme la solution de tomate d'origine.
Répétez les étapes 1 à 4 pour obtenir 5 essais.
Répétez les étapes 1 à 5 en utilisant une solution de tomate chauffée à 40 °C, 60 °C, 80 °C et 100 °C.
Données quantitatives
Tableau 1 pour montrer le volume de jus de tomate, qui a été chauffé à différentes températures, nécessaire pour neutraliser 0,5 cm3 de DCPIP dans un titrage
Température à laquelle la solution de tomate a été chauffée ±1 °C Point de départ du volume de solution de tomate
±0,1 cm3 (1 DP) Point final du volume de solution de tomate
±0,1 cm3 (1 DP) Titre de solution de tomate
±0,1 cm3 (1 DP) Moyenne ±0,1 cm3 (1 DP) Écart type ±0,1 cm3 (1 DP)
20 Essai 1 0,0 4,2 4,2 5,0 0,8
Essai 2 11,5 17,6 6,1
Essai 3 17,6 23,0 5,4
Essai 4 23,0 27,8 4,8
Essai 5 35,0 39,5 4,5
40 Essai 1 13,0 18,6 5,6 6,3 0,6
Essai 2 18,6 24,8 6,2
Essai 3 24,8 31,5 6,7
Essai 4 31,5 37,4 5,9
Essai 5 37,4 44,5 7,1
60 Essai 1 14,0 19,8 5,8 6,5 0,7
Essai 2 19,8 26,7 6,9
Essai 3 26,7 33,2 6,5
Essai 4 33,2 39,2 6,0
Essai 5 39,2 46,7 7,5
80 Essai 1 13,8 21,0 7,2 7,4 0,9
Essai 2 21,0 27,8 6,8
Essai 3 27,8 34,1 6,3
Essai 4 34,1 42,5 8,4
Essai 5 41,5 49,8 8,3
100 Essai 1 11,1 18,6 7,5 7,7 0,3
Essai 2 18,6 26,7 8,1
Essai 3 26,7 34,0 7,3
Essai 4 34,0 41,7 7,7
Essai 5 41,7 49,5 7,8

Exemple de calcul :
En utilisant les données des 5 essais de solution de tomate chauffée à 20 °C :
Titre moyen de la solution de tomate :(4.2 〖cm〗^3+6.1〖cm〗^3+5.4〖cm〗^3+4.8〖cm〗^3+4.5〖cm〗^3)/5=5.0〖cm〗^ 3
Écart-type : σ=√(((4,2-5,0)^(2 ) 〖+(6,1-5,0)〗^2 〖+(5,4-5,0)〗^2 〖+(4,8-5,0)〗^2+(4,5 -5,0)^2 )/5)= 0,75828≈0,8 cm3 (1 DP)
Données qualitatives:
Température à laquelle la solution de tomate a été chauffée (°C) Observations pendant le chauffage Observations pendant le titrage
20 – Le point final était rouge/orange. Cependant, il y avait encore une légère teinte de DCPIP. De plus, après un certain temps, la solution s'assombrit à nouveau.
40 La couleur du jus de tomate n'a pas changé. Les bulles n'ont pas été produites.
60 La couleur de la solution de tomate n'a pas changé. Des bulles se sont produites dans l'eau du bain-marie.
80 Plus de bulles ont été produites dans l'eau du bain-marie. Légère noircissement de la solution de tomate.
100 La solution de tomate a viré au brun et produit de la mousse. L'eau dans un bécher bouillie.
Données traitées
Bien que les éléments suivants soient des calculs chimiques, ils me permettent de comprendre la signification de mon expérience de biologie :
Je sais d'après mes informations de base que 1 mol de DCPIP réagit avec 1 mol de vitamine C. Puisque je connais la concentration de DCPIP, je peux calculer la mol de DCPIP qui a réagi et donc la mol de vitamine C dans chaque solution de tomate.
Une solution de DCPIP à 1 % suggère qu'il y a 1 g de DCPIP pour 100 g d'eau. Ainsi,
1/100g=x/0,5g→x=0,005 g DCPIP dans 0,5 cm3 de solution à 1%

Pour trouver les moles on divise la masse par la masse molaire : moles=masse/(masse molaire)
Mr de DCPIP : 268,1 g mol-1
moles de DCPIP ayant réagi au titrage=(0,005 g)/(268,1 g 〖mol〗^(-1) )=1,865 x 10-5 mol
Ainsi, 1,865 x 10-5 mol de vitamine C ont également réagi lors du titrage.
Pour trouver la masse de Vitamine C qui a réagi au titrage j'utilise la formule :
masse ayant réagi = Mr (vitamine C) x mol (de vitamine C ayant réagi)
Mr de Vitamine C : 176,12
1,865 ×〖10〗^(-5) mol ×176,1 g mol〖 g〗^(-1)= 0,00328 g

Ce qui suit est un exemple de calcul pour l'essai 1 de la solution à 20 °C pour expliquer comment le g de vitamine C dans 100 g de tomate pure chauffée à 20 °C a été obtenu. J'ai choisi 100 grammes car c'est la quantité standard utilisée dans l'industrie alimentaire me permettant de comparer mes résultats aux valeurs de la littérature.
Titre : 4,2 cm3
Il y avait donc 0,00328 g de vitamine C dans 4,2 cm3 de solution de tomate à 75 %.
Pour trouver g de Vitamine C dans 100 cm3 de solution de tomate à 75 % :
(0,00328 g)/(4.2 〖cm〗^3 )=x/(100 〖cm〗^3 )→x= 0.078 ≈ 0.08 g (2 DP)

Une solution de tomate à 75 % fait référence au % de masse de tomate dans la solution. Afin d'obtenir un rapport masse/volume égal au g de vitamine C dans 100 cm3, j'ai calculé la densité de la solution de tomate. La purée de tomates a une densité de 1,12 g par cm3 et l'eau a une densité de 1 g par cm3. 100 g de solution de tomates à 75 % se composent de 75 g de purée de tomates et 25 g d'eau :
├ █(75 g de purée de tomates occuperaient (75,00 g)/(1,12 g cm^(-3) )=66,96 cm^[email protected] g d'eau a un volume de 25 〖cm〗^[email protected])>25+ 66,96=91,96 〖cm〗^(3 ) est le volume de 100 g de solution de tomate à 75 %
Par conséquent, (75 g)/(91,96 〖cm〗^3 ) est le rapport de la masse de tomate au volume de solution.

Pour trouver les grammes de vitamine C dans 100 g de tomate pure, j'ai divisé le g de vitamine C dans 100 cm3 de la solution à 75 % par le rapport tomate/volume de la solution à 75 % :
0,078 g/(75 g)/(91,96 〖cm〗^3 ) = 0,09563 g ≈ 0,10 g ±0,01g (2 DP) de Vitamine C dans 100 grammes de solution.

Les g de vitamine C pour 100 cm3 des solutions de chaque essai sont résumés dans le tableau de la page suivante :
Le tableau 2 montre la quantité calculée de vitamine C dans 100 cm3 de la solution à 100 %. Il comprend également la valeur moyenne ainsi que l'écart-type, l'erreur-type et l'erreur-type 2. Les valeurs indiquées sont arrondies à deux décimales car il s'agit de la précision de la balance utilisée. Cependant, comme ce niveau de précision ne permet pas d'apprécier les différences d'écart type ou d'erreur type, j'ai ajouté un tableau en annexe avec les valeurs à 4 décimales.
Température à laquelle la solution de tomate a été chauffée ±1 °C
Masse de Vitamine C (g) dans 100 cm3 de solution pure
±0,01 g (2 DP) Grammes moyens de vitamine C dans 100 g de solution solution pure
±0,01g (2 DP) écart type
±0.01g
(2 DP) erreur standard
±0.01g
(2 DP) 2 erreur standard
±0.01g (2DP)

20
Essai 1 0,10 0,08 0,01 0,01 0,01
Essai 2 0,07
Essai 3 0,07
Essai 4 0,08
Essai 5 0,09

Essai 1 0,07 0,06 0,01 0,00 0,01
Essai 2 0,06
Essai 3 0,06
Essai 4 0,07
Essai 5 0,06

Essai 1 0,07 0,06 0,01 0,00 0,01
Essai 2 0,06
Essai 3 0,06
Essai 4 0,07
Essai 5 0,05

Essai 1 0,06 0,06 0,01 0,00 0,01
Essai 2 0,06
Essai 3 0,06
Essai 4 0,05
Essai 5 0,05

Essai 1 0,05 0,05 0,00 0,00 0,00
Essai 2 0,05
Essai 3 0,06
Essai 4 0,05
Essai 5 0,05

Exemple de calcul :
En utilisant les données des 5 essais de solution de tomate chauffée à 20 °C :
Moyenne g de Vitamine C dans 100 g de solution : (∑▒x)/N :(0,09858 g+0,0659g+0,0745g+0,0838g+0,0894g)/5=0,0819g≈0,08 g
Écart-type : σ=√((∑▒〖(XX ̅)〗^2 )/N) σ=√(((0,0958-0,0819)^(2 ) 〖+(0,0659-0,0819)〗^2 〖+(0,0745 -0,0819)〗^2 〖+(0,0838-0,0819)〗^2+(0,0894-0,0819)^2 )/5)=0,0118≈0,01 (2 DP)
Erreur standard :(0,0118)/√5 = 0,0053≈0,01 (2 DP) 2 erreur standard : 0,0053x 2=0,0106≈0,01
Graphique
Graphique 1 montrant la masse de vitamine C dans la tomate pure chauffée à différentes températures avec des barres d'erreur représentant 2 erreurs standard
La courbe de meilleur ajustement dans ce graphique montre une corrélation négative entre la température à laquelle la solution de tomate a été chauffée et g de vitamine C pour 100 g de tomate dans la solution. Les barres d'erreur représentent 2 erreurs standard, il y a donc 95% de chances que les vraies valeurs se trouvent dans les barres.
Conclusion
Données qualitatives:
Mes données qualitatives n'ont pas indiqué de changement dans la quantité de vitamine C. Néanmoins, le noircissement de la couleur de la solution de tomate pourrait être dû au fait que les caroténoïdes rouges de la tomate se dégradent à haute température.
Données quantitatives:

Mes données quantitatives ont vu un volume croissant de solution de tomate réagir avec le DCPIP à mesure que la température augmentait. Comme la vitamine C et le DCPIP réagissent dans un rapport de 1:1, un volume croissant pour la même quantité de DCPIP signifiait que la concentration de vitamine C diminuait avec l'augmentation de la température. Ainsi mon hypothèse selon laquelle « la teneur en vitamine C de la tomate sera inversement proportionnelle à la température » ​​a été confirmée

J'ai utilisé mes résultats de titrage pour calculer le g de vitamine C pour 100 g de tomate pure pure. Ces calculs chimiques ont indiqué que la tomate pure chauffée à 20 °C avait 0,08 g pour 100 g tandis que la tomate chauffée à 100 °C avait 0,05 g pour 100 g. Cela constitue une diminution de 33% de la teneur en vitamine C.
Le tracé des données dans un graphique montre qu'il existe une tendance globale à la baisse tout au long des 5 essais. Cependant, alors que j'ai émis l'hypothèse que la « vitamine C diminuera assez constamment avec la température car la dénaturation de la L-ascorbate oxydase sera compensée par la forte augmentation de l'activité cinétique des particules », dans le graphique obtenu n'est pas linéaire, on peut observer la la diminution la plus significative de la teneur en vitamine C se situe entre 20 °C et 40 °C et après cela, il n'y a pas de différence significative entre 40 °C à 60 °C et 80 °C à 100 °C car les barres d'erreur se chevauchent. Cela pourrait être dû au fait que l'enzyme L-ascorbate oxydaze présente dans les tomates, qui catalyse l'oxydation de la vitamine C, fonctionne de manière optimale entre 20 °C et 40 °C, et se dénature peu de temps après. En effet, selon la fiche d'information sur l'enzyme fournie par SEKISUI ENZYMES, la température optimale du L-ascorbate oxydaze est de 45 °C et son activité décline rapidement par la suite. Dans l'ensemble, comme les températures supérieures à 20 °C sont assez courantes, mes données indiqueraient qu'il est très important que les tomates soient conservées à une température fraîche pour éviter une réduction significative de la vitamine C.
Les données de g de vitamine C pour 100 g de tomate n'étaient pas dispersées comme le montre l'erreur type de 0,1 cm3 pour 4 des essais. Ceci est insignifiant car l'incertitude était de ±0,1 cm3. Néanmoins, les valeurs n'étaient pas exactes, comme en témoigne le fait qu'à 20 °C, j'ai calculé une teneur en vitamine C de 0,08 g pour 100 g alors que la valeur de la littérature, selon l'USDA, est de 0,0137 g. Il s'agit d'une différence qui conduit à un pourcentage d'erreur très élevé de 484 %. Comme l'incertitude de ± 0,01 g est beaucoup plus petite que l'erreur de 0,07 g, je peux conclure que les plus grandes erreurs de mon expérience étaient systématiques (comme l'eau) et non aléatoires. Je vais expliquer ces erreurs plus loin dans l'évaluation. Néanmoins, la prédominance de l'erreur systématique m'amène à conclure que la tendance globale est exacte car une erreur systématique affecte également les essais.
La tendance à la baisse de mes résultats est cohérente avec une expérience réalisée par Lucia Sánchez-Moreno, publiée dans un article intitulé « Impact du traitement thermique à haute pression et traditionnel de la purée de tomates sur les caroténoïdes, la vitamine C et l'activité antioxydante » pour The Journal of the Sciences de l'Alimentation et de l'Agriculture. Un article de l'Université fédérale de technologie d'Owerri, au Nigeria, intitulé « Effets de la température sur la teneur en vitamine C dans les agrumes » a également révélé que les diminutions les plus significatives de la teneur en vitamine C se sont produites entre 30 °C et 40 °C et 70 °C. et 80°C. Bien que ces expériences aient été faites sur des agrumes, la nature de l'acide ascorbique présent est la même.

Problèmes survenus pendant l'expérience Effet qu'ils ont eu sur l'expérience Améliorations à apporter si l'expérience était répétée
La méthode de titrage présentait des inexactitudes dues au fait que le point final était difficile à déterminer car la solution de tomate n'était pas incolore. Il s'agissait d'une erreur systématique dans ma méthode car le point final n'était pas précis. Cela peut être vu par la grande erreur par rapport aux valeurs de la littérature de 484 % ou qui n'est pas expliquée par la petite incertitude de ± 0,01 g. La solution de tomate serait filtrée à l'aide d'un filtre moins perméable ou d'une centrifugeuse pour produire une solution plus claire. Cela permettrait d'observer plus clairement le changement de couleur dans le DCPIP. Un colorimètre pourrait être utilisé pour obtenir un point final plus précis. Une méthode totalement différente pourrait être utilisée. Par exemple, mesurer l'absorbance de la solution à l'aide d'un spectroscophotomètre UV. Cependant, le laboratoire de l'école ne disposait pas de cet appareil.
Pendant mon titrage, j'ai essayé de faire tourner les tubes à essai de manière cohérente tout au long des essais. Néanmoins, comme cela a été fait avec ma main, il n'a pas été contrôlé correctement car il est sujet à l'erreur humaine. Par conséquent, la quantité de mélange qui s'est produite dans chaque essai était différente. Différentes quantités de mélange entraîneront différentes vitesses de réaction. Ceci est important car un taux plus lent entraînera le titrage de plus de solution de tomate, diminuant sa valeur pour la teneur en vitamine C. Faire tourbillonner une solution augmente l'énergie cinétique des particules, augmentant le nombre de collisions réussies entre les particules. De plus, le mélange permet aux deux solutions d'entrer en contact plus facilement. S'il n'y a pas de mélange, les solutions mettront plus de temps à entrer en contact les unes avec les autres car elles dépendront uniquement de la diffusion. Si l'expérience était répétée, j'utiliserais un agitateur magnétique. Comme il est mécanique, il permettra aux solutions de chaque essai d'être mélangées de manière égale et ainsi de réduire l'erreur aléatoire dans mon expérience.
La DCPIP était saturée. Du DCPIP solide déposé dans le ballon. J'ai supposé que le DCPIP était une solution à 1%. Cependant, du DCPIP avait précipité hors de la solution, le pourcentage réel de DCPIP dans la solution était légèrement inférieur. Cela a augmenté les valeurs de vitamine C. Cela pourrait expliquer une partie du pourcentage d'erreur de 484 % par rapport aux valeurs de la littérature. Si l'expérience était répétée, j'utiliserais une solution DCPIP plus diluée. Cela garantirait que la solution n'était pas saturée, de sorte qu'aucun DCPIP n'était déposé au fond. De plus, cela permettrait à la solution d'être plus homogène. De plus, avec une solution plus diluée, je pourrais utiliser des volumes plus importants dans le titrage. Cela réduirait l'effet des incertitudes. De plus, je ferais la solution moi-même et ne compterais pas sur les techniciens de laboratoire.
Lors du calcul de la masse de vitamine C, j'ai supposé que lorsque la solution devenait incolore, toutes les molécules de DCPIP avaient réagi. Cependant, cela n'aurait pas pu être le cas. Si toutes les molécules de DCPIP n'ont pas réagi, alors, en raison de mon hypothèse selon laquelle l'acide ascorbique et le DCPIP ont réagi dans un rapport 1:1, une masse de vitamine C inexactement faible a été calculée. Cependant, il est peu probable que cette erreur ait été significative car mes masses calculées étaient bien supérieures aux valeurs de la littérature. Si l'expérience était répétée, j'utiliserais une méthode différente pour calculer la vitamine C. Au lieu d'utiliser des calculs chimiques en moles, j'aurais pu titrer le DCPIP avec une solution connue de vitamine C (en utilisant un comprimé d'acide ascorbique). La masse connue de Vitamine C dans cette solution de Vitamine C sera égale au volume de Vitamine C dans la solution de tomate titrée. Par conséquent, j'ai pu trouver les masses de vitamine C dans chaque solution.
Problèmes survenus pendant l'expérience Effet qu'ils ont eu sur l'expérience Améliorations à apporter si l'expérience était répétée
Dans mon expérience, il a fallu diluer et filtrer la purée de tomates pour que le titrage soit précis.
Cependant, comme j'étais intéressé à connaître la teneur en Vitamine C de 100 g de purée de tomate pure afin de la comparer à des valeurs connues, j'ai utilisé la valeur de Vitamine C dans la dilution et je l'ai divisée par la masse de purée de tomate dans le solution à prendre en compte pour la dilution. En faisant ce calcul, j'ai supposé que l'eau n'avait eu aucun effet sur la diminution de la teneur en vitamine C. Ceci est discutable car l'eau est nécessaire pour que la vitamine C s'oxyde. Néanmoins, il y avait déjà de l'eau présente dans la tomate pure. De plus, l'eau a affecté tous les essais de la même manière, de sorte qu'elle n'a pas affecté la tendance globale. Si l'expérience était répétée, je ne diluerais pas la purée de tomates dans l'eau. Ceci ne permettrait néanmoins pas à la méthode de titrage d'être utile donc une méthode différente serait nécessaire telle que la technique spectroscopique expliquée précédemment.
Complément d'enquête:
Il serait intéressant d'étudier ce qui arrive à la teneur en vitamines au-dessus de 100 °C, car les températures de cuisson varient normalement entre 140 °C et 165 °C en raison de la nature des réactions de Maillard qui se produisent.
De plus, il serait intéressant d'étudier les effets d'un stockage à long terme à des températures inférieures à zéro par rapport aux températures ambiantes normales. Ceci est important parce que mon expérience m'a appris qu'à la température la plus basse, c'était le moment où la plupart des oxydations se produisaient. Ainsi, si le stockage à ces températures conduit également à des niveaux d'oxydation importants, la congélation des produits devrait peut-être être envisagée afin de maintenir la teneur en vitamine C.


8.5 : Fruits - Biologie

La mouche des fruits de la sapote, Anastrepha serpentine (Wiedemann), parfois appelée mouche serpentine des fruits, est fréquemment interceptée dans les ports d'entrée des États-Unis dans divers hôtes de plusieurs pays. C'est une espèce nuisible importante au Mexique parce que ses larves infestent la sapote, la sapotille, le lucuma du saule et les fruits apparentés.

Figure 1. Femelle adulte. Dessin de la Division de l'industrie végétale.

Synonymie (Retour en haut)

Dacus serpentine Wiedemann, 1830
Leptoxys serpentine (Wiedemann), 1843
Urophora vittithorax Macquart, 1851
(Trypète) Acrotoxa serpentine (Wiedemann), 1873
Acrotoxa serpentine (Wiedemann)

Distribution (Retour en haut)

Cette espèce est l'une des plus répandues du genre Anastrepha. Son aire de répartition s'étend du nord du Mexique au sud jusqu'au Pérou et au nord de l'Argentine, et est signalée à Trinidad, Tobago et Curaçao. Il a également été piégé dans le sud du Texas aux États-Unis, mais il n'est pas certain qu'il y ait des populations reproductrices (Norrbom 2003).

Si Anastrepha serpentine ont été introduits dans le sud de la Floride, il pourrait devenir un grave ravageur des fruits tropicaux qui y sont cultivés.

Description (Retour en haut)

Adulte: L'adulte est une mouche brun foncé de taille moyenne, avec des marques jaune pâle et brun orangé. Le dos du thorax est brun foncé avec des marques jaunes. L'aile mesure 7,25&ndash8,5 mm de long. Les bandes alaires sont principalement brun foncé, et les bandes côtières et S sont assez largement coalescentes. Sur l'aile, les zones hyalines de chaque côté de la jonction touchent rarement la veine R4+5, sans bras distal à la bande V. Le bras proximal est mince et entièrement séparé de la bande S. Le dos de l'abdomen est marqué de brun foncé, de jaune brunâtre et d'orange. La couleur des pattes varie du jaune pâle au jaune brunâtre, ou brun d'un côté et jaune pâle de l'autre.

La gaine de l'ovipositeur de la femelle mesure 3,0 à 3,9 mm de long, est brun orangé, plutôt robuste à la base et déprimée à l'apex. Les stigmates sont à environ 1,2 mm de sa base. L'ovipositeur lui-même mesure 2,8 à 3,7 mm de long, avec une pointe légèrement plus que la moitié apicale en dent de scie.

Figure 2. Pointe d'ovipositeur. Dessin de la Division de l'industrie végétale.

Larve: La larve mature est relativement grande pour les mouches des fruits, 9&ndash10 mm de long et 1,5 mm de diamètre, avec la forme allongée habituelle. Les organes respiratoires antérieurs ont les parties externes quelque peu en forme d'éventail, mais presque plates sur le dessus, avec 17 à 19 petits tubules épais et courts. Pour les caractères larvaires détaillés, voir Phillips (1946).

Anastrepha serpentine, le type du genre, fait partie d'un groupe de quatre espèces qui diffèrent sensiblement par leur couleur des autres espèces du genre. Comme illustré par Stone (1942), Anastrepha anomala La pierre a le modèle d'aile comme dans Anastrepha serpentine, mais a un ovipositeur plus long et un motif sombre réduit sur la plèvre et l'abdomen.Anastrepha orné Aldrich a séparé les bandes costales et V, et Anastrepha pulchra La pierre a une grande tache noire dans le disque de l'aile.

Cycle de vie et biologie (Retour en haut)

Les femelles peuvent pondre jusqu'à 600 œufs en un mois et demi environ. Les fruits verts mûrs sont apparemment préférés. On a observé que les femelles continuaient à pondre sur des périodes allant de 21 à 29 semaines dans des conditions de laboratoire.

Figure 3. Oeuf de la mouche des fruits de la sapote, Anastrepha serpentine, par rapport à d'autres Anastrepha espèce. Dessin de la Division de l'industrie végétale.

Hôtes (Retour en haut)

Les plantes alimentaires préférées sont des membres de la famille des Sapotacées, en particulier la pomme étoilée, Chrysophyllum cainito, et sapotille, Manilkara zapota. Les autres hôtes incluent :

  • Annona glabra, pomme d'étang
  • Citrus mitis, calamondin Citrus paradisi, pamplemousse Citrus sinensis, Orange douce
  • Cydonia oblonga, coing
  • Dovyalis hebecarpa, 'Groseille de Ceylan'
  • Ficus spp.
  • Malus sylvestris, Pomme sauvage européenne
  • Mammea américaine, pomme mammée
  • Mangifera indica, mangue
  • Mimusops coriacea, pomme de singe
  • Persea americana, avocat
  • Poutéria lucuma, 'lucuma' Poutéria sapota, mamey sapote
  • Prunus persica, pêche
  • Psidium guajava, goyave commune
  • Pyrus communis, poire européenne
  • Sideroxylon palmeri et Sideroxylon tempisque, intimider les arbres
  • Spondias mombin, jobo ou prune de porc

De plus, des larves ont été élevées expérimentalement à partir de tomate, Lycopersicum esculentum.

Dommages (Retour en haut)

Les infestations de fruits mûrs sur les arbres sont souvent si élevées que dans certaines régions du Mexique, en particulier à Veracruz, les producteurs cueillent les fruits verts et les font mûrir artificiellement pour éviter l'infestation. Les fruits ainsi mûrs, cependant, sont inférieurs aux fruits mûrs dans les arbres.

Références sélectionnées (Retour en haut)

  • Baker AC, Stone WE, Plummer CC, McPhail M. 1944. Un examen de la mouche des fruits mexicaine et des espèces apparentées. U.S. Department of Agriculture Miscellaneous Publication No. 531, Washington, D.C. 155 pp.
  • Phillips VT. 1946. La biologie et l'identification des larves de trypétides (Diptera : Trypetidae). Mémoires de l'American Entomological Society 12, 161 pp.
  • Stone A. 1942. Les mouches des fruits du genre Anastrepha. U.S. Department of Agriculture Miscellaneous Publication No. 439, Washington, D.C. 112 pp.
  • Blanc IM, Elson-Harris MM. 1994. Les mouches des fruits d'importance économique : leur identification et bionomie. CAB International. Oxon, Royaume-Uni. 601 p.

Conception Web : Don Wasik, Jane Medley
Numéro de publication : EENY-206
Date de publication : avril 2001. Dernière révision : janvier 2015. Révisé en avril 2018.


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